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1、动物细胞培养的一般步骤是什么：“初代培养”一般实验过程及操作注意事项

初代培养：动物机体各种组织从机体中取出，经各种酶、EDTA或机械法处理，分散成单细胞，在培养基中培养，使细胞得以生存、生长和繁殖，这一过程称原代培养。

常用的初代培养有组织块培养和分散细胞培养。组织块培养是将剪碎的组织块直接移植在培养瓶壁上，加入培养基后进行培养。分散细胞培养则是将组织块用机械法或化学法使细胞分散。如欲从胎儿或新生儿的组织分离到活性较好的游离细胞，经典的方法是用蛋白水解酶(如胰蛋白酶和胶原酶)消化细胞间的结合物，或用金属离子螯合剂(如EDTA)除去细胞互相粘着所依赖的Ca2＋，再经机械轻度振荡，使之成为单细胞。

实验所需设备：

AlphaClean1300洁净工作台

HF180二氧化碳培养箱

AlphaClean1300洁净工作台、培养瓶、HF180二氧化碳培养箱、青霉素瓶、小玻璃漏斗、平皿、吸管、移液管、纱布、手术器械、血球计数板、低速离心机、水浴箱（或恒温箱）

实验所需试剂：培养基（含20%小牛血清），0.25%胰酶，Hank′s液，碘酒

实验所需样本：动物组织块

初代消化培养法：

1、已消毒培养用品置于AlhaClean1300洁净台的净化台面，紫外线消毒20分钟；

2、开始工作前先洗手、75%酒精擦拭手至肘部，开启红外灭菌器或酒精灯，安装吸管帽；

3、Hank′s液漂洗组织2-3次（把组织块置于烧杯中），去血污（如怀疑组织可能污染，先置于含有青链霉素的混合液中30~60分钟）；

4、用眼科剪将组织切成块（2~3毫米大小），加入比组织块总量多30-50倍的胰蛋白酶液，一并倒入三角烧瓶中，结扎瓶口或塞以胶塞；

5、用恒温水浴或置于37℃恒温箱消化，消化中每隔20分钟摇动一次，消化时间依组织块的大小和组织的硬度而定;

6、消化过程中见消化液发混浊时，可用吸管吸出少许消化液在镜下观察，如组织已分散成细胞团或单个细胞，立即终止消化，随即通过不锈钢筛滤掉尚未充分消化开的组织块，低速（500~1000 RPM/min）离心消化液5分钟，吸出上清，加入适量含有血清的培养液；

7、用计数板计数，如细胞悬液细胞密度过大，再补加培养液调整后，分装入培养瓶中。对大多数细胞来说，pH要求在7.2~7.4范围，培养液呈微红色，如颜色偏黄，说明液体变酸，可用NaHCO₃调整；

8、放置于CO₂培养箱中培养箱，温度为：36.5℃，瓶口需用纱布棉塞或螺旋帽堵塞，每次换液时需要换新塞。

无菌操作注意事项：

1、操作前要洗手，进入AlphaClean1300超净台后手要用75%酒精或0.2%新洁尔灭擦试，试剂等瓶口也要擦试；

2、点燃红外灭菌器或酒精灯，操作在火焰附近进行，耐热物品要经常在火焰上烧灼，金属器械烧灼时间不能太长，吸取过营养液的用具不能再烧灼，以免烧焦形成碳膜；

3、操作动作要准确敏捷，但又不能太快，以防空气流动，增加污染机会；

4、不能用手触已消毒器皿的工作部分，工作台面上用品要布局合理；

5、瓶子开口后要尽量保持45℃斜位；

6、吸溶液的吸管等不能混用；

7、组织块、胰蛋白酶、培养液等易受紫外线伤害的物品，在培养时再携入操作野；如预先置入，需用纸张覆盖，以免受射线影响；

智慧物联 HF180 CO₂培养箱介绍

专心、用心、精心设计，为细胞培养护航

提供洁净环境利于细胞生长，提供均一且稳定的温度、CO₂培养环境

提供湿度较高的培养环境

提供消除污染的灭菌功能

2、动物细胞培养的一般步骤是什么，动物细胞培养的步骤简介

动物细胞培养的一般步骤是什么?复苏，把冻存管从液氮中取出来，立即投入37℃水浴锅中，轻微摇动液体都融化后（大概1-1.5分钟），拿出来喷点酒精放到超净工作台里把上述细胞悬液吸到装10ml培养基的15ml的离心管中（用培养基把冻存管洗一遍，把粘在壁上的细胞都洗下来），1000转离心5分钟把上清液倒掉，加1ml培养基把细胞悬浮起来吸到装有10ml培养基的10cm培养皿中前后左右轻轻摇动，使培养皿中的细胞均匀分布标好细胞种类和日期、培养人名字等，放到CO2培养箱中培养，细胞贴壁后换培养基3天换一次培养基，现在小编就来说说关于动物细胞培养的一般步骤是什么?下面内容希望能帮助到你，我们来一起看看吧!

动物细胞培养的一般步骤是什么

复苏，把冻存管从液氮中取出来，立即投入37℃水浴锅中，轻微摇动。液体都融化后（大概1-1.5分钟），拿出来喷点酒精放到超净工作台里。把上述细胞悬液吸到装10ml培养基的15ml的离心管中（用培养基把冻存管洗一遍，把粘在壁上的细胞都洗下来），1000转离心5分钟。把上清液倒掉，加1ml培养基把细胞悬浮起来。吸到装有10ml培养基的10cm培养皿中前后左右轻轻摇动，使培养皿中的细胞均匀分布。标好细胞种类和日期、培养人名字等，放到CO2培养箱中培养，细胞贴壁后换培养基。3天换一次培养基。

传代，培养皿中的细胞覆盖率达到80%-90%时要传代。把原有培养基吸掉。加适当的胰蛋白酶（能覆盖细胞就行），消化1-2分钟。细胞都变圆后加如入等体积的含血清的培养基终止消化。用移液枪吹打细胞，把细胞都悬浮起来。把细胞吸到15ml的离心管中，1000转离心5分钟。倒掉上清液，加1-2ml培养基，把细胞都吹起来。根据细胞种类把细胞传到几个培养皿中。一般，癌细胞分5个，正常细胞传3个。继续培养。

冻存，把细胞消化下来并离心（同上）。用配好的冻存液把细胞悬浮起来，分装到灭菌的冻存管中，静止几分钟，写明细胞种类，冻存日期。4℃ 30min，-20℃ 30min，-80℃过夜，然后放到液氮灌中保存。冻存液的配制：70%的完全培养基 20??%DMSO. DMSO要慢慢滴加，边滴边摇。

本文关键词：动物细胞培养操作流程，动物细胞培养的方法主要有，动物细胞培养的四个条件，动物细胞的培养过程，动物细胞培养的常见操作方式。这就是关于《动物细胞培养的一般步骤是什么，“初代培养”一般实验过程及操作注意事项》的所有内容，希望对您能有所帮助！更多的知识请继续关注《犇涌向乾》百科知识网站：http://www.029ztxx.com！